Острый послеродовой эндометрит у коров
Rp.: Sol. Glucosi 40 % - 200,0 ml
D. S. Внутривенно; на одно введение.
3. Хлорид кальция 10% - 100 мл внутривенно.
Rp.: Solutionis Calcii chloridi 10 % - 100ml
D. S. Внутривенно.
4. Тривит подкожно 5 мл.
Rp.: Sol. Triviti 5 ml
D.S.внутримышечно, один раз в 7 дней.
1. Ввели синэстрол 2% 3мл
Rp.: Sol. Sinestroli Oleosae – 2% 3ml.
D.S. внутримышечно, по 1 ампуле за 1 введение.
2. Внутримышечно бициллин-3.
Rp.: Bicillini-3 - 1200000 ED
D. S. Внутримышечно; на одно введение.
18.03.08
утро
1.Промывали матку 3%-м гипертоническим р-м натрия хлорида.
2. Проводили массаж матки.
3. Ввели глюкозу 40% - 200 мл
Rp.: Sol. Glucosi 40 % - 200,0 ml
D. S. Внутривенно; на одно введение.
4. Хлорид кальция 10% - 100 мл внутривенно.
Rp.: Solutionis Calcii chloridi 10 % - 100ml
5. Подкожно карбахолин 2 мл.
Rp.: Carbacholini – 0.1% 2ml
D.t.d. №2 in ampullis
S. подкожно, по 1 ампуле на 1 введение.
1. Спринцевание матки фурациллином 1:5000.
2. В полость матки ввели 3 свечи с фурагином.
Rp.: Furasgini suppos. vaginalis – 1.0
D.t.d. №28
S. внутриматочно, по 3 суппозитория на 1 введение.
3. Проводили надплевральную новокаиновую блокаду по В.В. Мосину.
19.03.08
утро
1. Промывали матку 3%-м гипертоническим р-м натрия хлорида.
2. Проводили массаж матки.
3. Ввели глюкозу 40% - 200 мл
4. Хлорид кальция 10% - 100 мл внутривенно.
Rp.: Solutionis Calcii chloridi 10 % - 100ml
5. Внутримышечно окситоцин 40 ED.
Rp.: Oxitocini – 40ЕD
D.t.d. № 8 in ampullis
S. подкожно, 8 ампул на одно введение
6. Ввели синэстрол 2% 3мл
Rp.: Sol. Sinestroli Oleosae – 2% 3ml.
D.S. внутримышечно, по 1 ампуле за 1 введение.
7. Подкожно карбахолин 2 мл.
Rp.: Carbacholini – 0.1% 2ml
D.t.d. №2 in ampullis
S. подкожно, по 1 ампуле на 1 введение.
1. Ввели синэстрол 2% 3мл
Rp.: Sol. Sinestroli Oleosae – 2% 3ml.
D.S. внутримышечно, по 1 ампуле за 1 введение.
2. В полость матки ввели 2 таблетки экзутера.
20.03.08
утро
1. Проводили массаж матки.
2 1:5000.
3. Йодинол 100 мл внутриматочно.
Rp.: Jodinoli 100 ml.
D.S. внутриматочно.
1.Внутримышечно бициллин-3.
Rp.: Bicillini-3 - 1200000 ED
D. S. Внутримышечно; на одно введение.
2. В полость матки ввели 2 таблетки экзутера.
21.03.08
утро
1. Животному предоставили моцион.
2. Проводили массаж матки.
3. Йодинол 100 мл внутриматочно.
Rp.: Jodinoli 100 ml.
D.S. внутриматочно
1. В полость матки ввели 3 свечи с фурагином.
2. Внутримышечно окситоцин 40 ED.
Rp.: Oxitocini – 40ЕD
D.t.d. № 8 in ampullis
S. подкожно, 8 ампул на одно введение.
3. Спринцевание матки фурациллином 1:5000.
22.03.08
утро
вечер
1. Животному предоставили моцион.
2. Проводили массаж матки.
3. Спринцевание матки фурациллином 1:5000.
4. В полость матки ввели 3 свечи с фурагином.
Rp: Furasgini suppos. vaginalis – 1.0
D.t.d. №28
S. внутриматочно, по 3 суппозитория на 1 введение.
23.03.08
утро
1. Животному предоставили моцион.
2. Проводили массаж матки.
3. Спринцевание матки фурациллином 1:5000.
4. В полость матки ввели 3 свечи с фурагином.
Rp: Furasgini suppos. vaginalis – 1.0
D.t.d. №28
S. внутриматочно, по 3 суппозитория на 1 введение.
5. Внутримышечно бициллин-3.
Rp.: Bicillini-3 - 1200000 ED
D. S. Внутримышечно; на одно введение.
1. Внутримышечно окситоцин 40 ED.
Rp.: Oxitocini – 40ЕD
D.t.d. № 8 in ampullis
S. подкожно, 8 ампул на одно введение.
2. Йодинол 100 мл внутриматочно.
Rp.: Jodinoli 100 ml.
D.S. внутриматочно
24.03.08
утро
вечер
1. Тривит подкожно 5 мл.
Rp.: Sol. Triviti 5 ml
D.S.внутримышечно, один раз в 7 дней.
2. Моцион.
3. В полость матки ввели 3 свечи с фурагином.
Rp: Furasgini suppos. vaginalis – 1.0
D.t.d. №28
S. внутриматочно, по 3 суппозитория на 1 введение.
25.03.08
утро
вечер
1. Моцион.
2. В полость матки ввели 3 свечи с фурагином.
Rp: Furasgini suppos. vaginalis – 1.0
D.t.d. №28
S. внутриматочно, по 3 суппозитория на 1 введение.
26.03.08
утро
вечер
1. Моцион.
2. В полость матки ввели 3 свечи с фурагином.
27.03.08
утро
вечер
1. Моцион.
2. В полость матки ввели 3 свечи с фурагином.
3. Внутримышечно бициллин-3.
Rp.: Bicillini-3 - 1200000 ED
D. S. Внутримышечно; на одно введение.
28.03.08
утро
вечер
Состояние животного хорошее.
Корова с признаками выздоровления была передана на дальнейшую курацию вет. врачу хозяйства.
Моцион
2. В полость матки ввели 3 свечи с фурагином.
Rp: Furasgini suppos. vaginalis – 1.0
D.t.d. №28
S. внутриматочно, по 3 суппозитория на 1 введение.
ЭНДОМЕТРИТ (Endometritis), воспаление слизистой оболочки матки (эндометрия). По течению различают острый, подострый и хронический эндометриты; по клиническому проявлению - клинически выраженный и скрытый; по характеру воспаления - серозный, фибринозный, катаральный, гнойно-катаральный и гнойный; в зависимости от того, после чего он возникает, - послеродовой, постабортальный и посткоитальный (после осеменения). Эндометриты причиняют огромный экономический ущерб (бесплодие, гипогалактия).
Этиология
Ведущими факторами развития эндометритов являются: инфицирование и травмирование эндометрия при неправильном родовспоможении, задержание последа, атония и субинволюция матки, аборт, некоторые инфекционные и инвазионные болезни (бруцеллёз, вибриоз, трихомоноз), нарушение ветеринарно-санитарных правил при искусственном осеменении, распространение воспаления по продолжению с влагалища и шейки матки, неквалифицированная и несвоевременная акушерская помощь, и другие с последующим проникновением и участием в воспалительных процессах разнообразных ассоциаций условно-патогенной микрофлоры.
Из содержимого матки больных коров в 89.8% случаев выделяются микроорганизмы: кишечной палочки и протея (39.0%), стафилококков (30.5%), стрепто- и энтерококков (10.3%), аэробных споровых бацилл (8.5%), грибов (7.7%), и синегнойной палочки (4.0%) в 53.3% случаев обнаруживаются в ассоциациях и в 46.7% случаев – в монокультурах.
Выделенная микрофлора отличается высокой патогенностью и устойчивостью к антимикробным препаратам.
Развитию острого послеродового эндометрита у коров в послеродовом периоде под влиянием условно-патогенной микрофлоры способствует ослабленная иммунная система организма: увеличение числа лейкоцитов у больных животных на 7,78-30,03%, снижение количества лимфоцитов на 4,7%, лейкограмма крови от больных показывает появление сегментоядерных 3,0 и палочкоядерных 8,3 % форм клеток при одинаковом количестве юных 1,8% форм нейтрофилов, снижение общего белка на 0,44%, увеличение фракции γ–глобулина на 6,94 – 18,32% и нехарактерные изменения в концентрации α и β - глобулинов, при одновременном снижении уровня фракции альбуминов на 4,20 – 19,24%.
Причиной возникновения эндометритов может быть неполноценное кормление. Силосно-концентратный тип кормления, основа нашей интенсификации, нарушает рубцовое пищеварение у коров. Он приводит к снижению числа микробных тел, участвующих в расщеплении клетчатки. Возникает гипотония рубца, сокращается поступление микрофлоры рубца в тонкий отдел кишечника, следовательно, снижается количество поступивших в организм незаменимых аминокислот, источником которых она является. Снижается выработка микроорганизмами витаминов группы В. Такой тип кормления и некачественность кормов, при заниженном потреблении сена естественной сушки, вызывают нарушение обмена веществ по типу ацидоза и кетоза, при этом происходит перерождение (дистрофия) желез внутренней секреции и паренхиматозных органов.
Отсутствие изоляторов для животных, больных маститами, эндометритами, некробактериозами, бронхопневмониями, приводит к обсеменению животноводческих помещений условно-патогенной микрофлорой, выделяющейся с гнойным экссудатом. При редких дезинфекциях число микробных клеток превышает в 6-15 раз допустимые нормы (Б.Г. Панков, А.В. Жаров, 2001).
Из предрасполагающих факторов выделяют: гиподинамию, гиповитаминоз, минеральное голодание и др.
Выявлена сезонность заболевания коров острым послеродовым гнойно-катаральным эндометритом. Наибольшее количество животных заболевает в зимне-весенний период. Пик заболевания в хозяйствах равнинной и предгорной зонах пик заболевания приходится на март, в горной зоне на апрель.
В нашем случае, основным этиологическим фактором стала неквалифицированная помощь ветеринарного фельдшера, разорвавшего плодный пузырь до полного раскрытия шейки матки, что спровоцировало так называемые сухие роды. Руки перед введением в матки фельдшер не готовил по правилам асептики и антисептики, что могло послужить фактором заноса инфекции.
Патогенез
Важнейшим пусковым механизмом воспаления является повреждение тканей. Независимо от вида повреждающих агентов – инфекция, механическая травма, в клетках и субклеточных структурах обнаруживаются общие, неспецифические изменения, характерные для повреждения клетки (ткани).
Повреждение клетки, вызывающее воспаление, распространяется на субклеточные структуры – митохондрии, являющимися основными носителями окислительно-восстановительных ферментов. Вследствие этого окислительные процессы в воспаленной ткани менее интенсивны, чем в здоровой неповрежденной, происходит понижение дыхательного коэффициента (А.Д. Адо, 1970).
Повреждение других субклеточных структур – лизосом – сопровождается освобождением большого количества гидролитических ферментов (протеаз), катепсинов, ферментов гликолиза. Источником этих ферментов являются лизосомы макрофагов и паренхиматозных клеток той ткани, где происходит воспаление.
В самые начальные фазы воспаления лейкоциты (полиморфно-ядерные в первую очередь, а затем моноциты и лимфоциты) приклеиваются к эндотелиальной клетке и между ней и лейкоцитом как бы протягиваются нити. В последующем наступает сокращение эндотелиальной клетки и в образовавшуюся между двумя клетками щель устремляется псевдоподия лейкоцита, с её помощью довольно быстро лейкоцит оказывается в щели под эндотелиальной клеткой, которую он как бы отслаивает, а отверстие над ним замыкается соединяющимися вновь клетками эндотелия. Следующую преграду – базальную мембрану – лейкоцит преодолевает на основе так называемого феномена тиксотропии изотермически обратимого уменьшения вязкости коллоидного раствора. Вместе с тем результаты исследований Н.И. Цыран и Л.В. Королева (1971) указывают на то, что при лейкопениях не только наблюдается угнетение отечной реакции, но и изменяется характер её течения. Иначе говоря, при лейкопенических состояниях реактивность сосудов к факторам проницаемости (гистамину, кининам) сохраняется, но резко ослабляется реактивность к воспалительным раздражителям.
Воспалительный отек – активная реакция организма, зависящая от высоты его организации. И.И. Мечников (1923) указывал, что образование жидкого экссудата – генеалогически более поздний процесс, чем лейкоцитарная реакция. Этим объясняется значительное влияние нейрогуморальных механизмов на интенсивность отечной реакции. Повышение проницаемости микрососудов и экссудацию следует рассматривать как первое и наиболее быстро включающееся звено цепи защитно-физиологических реакций при воспалении (И.А. Ойвин, 1954). Защитная роль воспалительного отека проявляется в ограничении распространения по организму возбудителей воспаления и веществ, образующихся в самом очаге воспаления (токсины, продукты тканевого распада и прочие). Воспаление ведет к функциональному и морфологическому ограничению пораженных тканей.
Затрудненный переход веществ из очага воспаления в организм и в обратном направлении связан с ослаблением крово- и лимфообращения в воспаленной ткани из-за сдавливания сосудов воспалительным экссудатом. И.И. Мечников (1923) указывал, что целительная сила природы, главный элемент который составляет воспалительная реакция, вовсе не есть приспособление, достигшее совершенства. Повышение проницаемости сосудов и экссудация, начинающиеся как защитные процессы, в дальнейшем могут стать нежелательными проявлениями воспаления, ослабляя функции организма, и даже угрожая жизни. Возникает необходимость в противовоспалительной терапии.
При достаточной резистентности организма коров в толще матки в течение 5-7 дней образуется сплошной лейкоцитарный барьер, который препятствует дальнейшему распространению микробов. Благодаря этому воспалительный процесс купируется, ограничивается внутренней оболочкой матки и в последствии протекает в довольно легкой форме.
Клиническая картина
Клинические признаки у животного появились на 4 день после отела. При этом у коровы повысилась температура тела, снизился аппетит. По мере развития воспалительного процесса из половых путей выделялся катарально-гнойный экссудат. При вагинальном исследовании обнаруживался приоткрытый на 1-2 пальца канал шейки матки.
Слизистая оболочка матки гиперемирована, в ее полости находились выделения из матки. Ректальным исследованием была установлена увеличенная и опущенная в брюшную полость матка, стенка рогов дряблая, реакция на пальпацию слабая. Наличие в матке экссудата и продуктов тканевого распада создало благоприятные условия для быстрого распространения инфекции и накопления большого количества токсических веществ, которые, поступая в кровь, вызывают септическое состояние организма. Это клинически проявлялось угнетением животного, учащением пульса, дыхания, повышением температуры, снижением аппетита.
Обоснование диагноза
Со слов обслуживающего персонала животному было оказана неквалифицированная помощь при родах, спровоцировавшая, предположительно, занос инфекции в матку и сухие роды.
Ректальным исследованием выявили также увеличение матки в размерах, ее опущение в брюшную полость, попытка поднять ее тазовую полость не удается, стенка дряблая, сокращения матки вялые, в матке ощущаются флюктуирующая жидкость, выделение обильного количества гнойно-катарального экссудата из половых путей во время массажа матки.
При вагинальном осмотре слизистая оболочка влагалища и влагалищной части шейки матки была отечна, гиперемирована. Из канала шейки матки в полость влагалища выделялся воспалительный экссудат. В свою очередь из половой щели также отмечены истечения гнойно-катарального характера.
Все эти признаки позволяют установить диагноз - острый катарально-гнойный эндометрит.
Лечение и режим содержания
Лечение должно быть комплексным, направленным на :
удаление экссудата из полости матки;
подавление патогенной микрофлоры;
восстановление тонуса маточной мускулатуры;
повышение защитных свойств организма;
применение и симптоматического лечения при тяжелых состояниях. ( в/в 150-200 мл 10% глюкозы с аскорбиновой кислотой, антибиотики и сульфаниламиды, сердечные препараты.)
Наружные половые органы обмывают, обрабатывают антисептическими растворами, промывают влагалище.
Экссудат из полости матки удаляют при помощи шприца Жане, вакуум – насоса. При значительном скоплении омертвевших тканей их удаляют промыванием матки теплым (38-40°С) 2-3% р-ром питьевой соды, 2-4% р-ром ихтиола; растворами фурациллина или перманганата калия с обязательным удалением раствора через несколько минут. Промывание проводят в первый день лечения, повторяют при необходимости через 1-3 дня. Всего проводят не более 2 промываний.
Между промываниями корове вводят питуитрин 30-50 ЕД; 1-2%; внутрь дают СНАГШ 20-30мл/300-400 мл воды 1-2 раза в день с интервалом 6-12 часов в течение 3-5 суток; назначают и вазотропные препараты: прозерин 0,5% 2-3 мл.
В полость матки после промывания вводят фуразолидоновые свечи, неофур, метрасул, эридон, септиметрин по 3-5 штук 1 раз в день в течение 3-5 дней. Если в полости матки содержимого нет, то перед введением пенообразующих препаратов ( метромакс) следует ввести 100-150 мл стерильного физиологического раствора или раствора фурациллина.
Общую антибиотикотерапию желательно применять после определения чувствительности микроорганизмов.
При острых эндометритах показано применение новокаиновых блокад: околопочечной по Морозу или Мартынову, подсакральной тримекаиновой; внутриаортального введения 1% новокаина с добавление антибиотика и окситоцина.
Можно также рекомендовать применение нового запатентованного комплексного биогенного препарата ЭПЛ (экстракт плаценты с лещинником) из расчета 0,1 мл на 1 кг массы животного, вводится препарат в параректальную клетчатку 4-х кратно с интервалом 48 часов.
При лечении острого гнойно-катарального эндометрита у коровы были применены массаж матки через прямую кишку, промывание матки гипертоническим 3%-м р-м хлорида натрия, спринцевание ее фурациллином и следующие препараты: окситоцин, бициллин-3 в растворе новокаина, тривит для инъекций, свечи с фурагином и таблетки экзутера, карбахолин, синэстол, йодинол.
Окситоцин использовался в сочетании с массажем матки через прямую кишку. Окситоцин применялся для повышения тонуса и усиления сокращения гладкой мускулатуры матки.
Бициллин-3 использовался в лечении для подавления патогенной микрофлоры.
Тривит для инъекций использовался для активизации иммунобиологической реактивности организма и усиления регенерации тканей.
Свечи с фурагином и таблетки экзутера применяли, чтобы подавить развитие микробов в матке. С этой же целью применялся йодинол.
Синэстрол применяли для повышения чувствительности матки к окситоцину.
Карбахолин применяли для усиления сокращений матки и ускорения эвакуации экссудата из ее полости.
Животному в ходе лечения был назначен щадящий режим содержания, в рацион был добавлен грубый корм, с целью активизации деятельности рубцовой микрофлоры, животное было почищено, ежедневно проводилась санитарная обработка стойла, где оно содержалось, для снижения количества обитающей в окружающей среде микрофлоры.
Прогноз и исход болезни
В данном случае прогноз исхода болезни благоприятный, примененный базовый принцип лечения оказался эффективным, и в дальнейшем будет применяться по отношению к другим животным стада, с изменением тех или иных показателей, исходя из резистентности животных, чувствительности к антимикробным препаратам, условий возникновения.
Профилактика
1. Обеспечение в достаточном количестве кормами и организация полноценного кормления маточного поголовья животных, особенно в зимне-весенний период, а также в критические периоды коров и нетелей (сухостойный и первый месяц после отела)
2. Родовспоможение коровам оказывать в родильных отделениях со строгим соблюдением рекомендованных правил асептики.
3. Регулярное и качественное проведение дезинфекции в помещениях.
4. Улучшать микроклиматические показатели в помещениях для содержания дойного стада и в родильных отделениях молочно-товарной фермы.
5. У животных находящихся в родильном отделении брать кровь набиохимические исследования и исходя из этих показателей регулировать ходбеременности.
6. Проводить более детальное исследование и наблюдение животных впослеродовой период с целью предупреждения возникновения патологий состороны репродуктивной системы.
Список литературы:
Багманов М.А. Диагностика, лечение и профилактика заболеваний животных. // Ульяновск. 1999. стр. 25
Багманов М.А., Терентьева Н.Ю. Методическое пособие. К лабораторно-практическим занатиям по специализации «Акушерство и гинекология с.-х. животных». // Ульяновск. 2002. стр. 36
Панков Б.Г., Жаров А.В., Соколова Н.А. «Эндометриты у коров». // Практик. № 8 2001. стр. 44
Студенцов А.П. Ветеринарное акушерство и гинекология. // Москва. Колос. 1970.
Григорьева Т.Е. Лечение и профилактика эндометритов у коров. // Москва. Росагропромиздат, 1988.
Терешенков А.С. Профилактика и лечение акушерско-гииекологических заболеваний коров. // Минск. Ураджай. 1990.
